本文目录一览：
酒精灯的正确使用方法
操作方法
酒精灯的火焰
(1)新购置的酒精灯应首先配置灯芯。灯芯通常是用多股棉纱线拧在一起洗耳球的正确使用方法，插进灯芯瓷套管中。灯芯不要太短洗耳球的正确使用方法，一般浸入酒精后还要长4—5cm。
对于旧灯，特别是长时间未用的灯，在取下灯帽后，应提起灯芯瓷套管，用洗耳球或嘴轻轻地向灯内吹一下，以赶走其中聚集的酒精蒸气。再放下套管检查灯芯，若灯芯不齐或烧焦都应用剪刀修整为平头等长。
(2)新灯或旧灯壶内酒精少于其容积1/4的都应添加酒精。酒精不能装得太满，以不超过灯壶容积的2/3为宜。（酒精量太少则灯壶中酒精蒸气过多，易引起爆燃；酒精量太多则受热膨胀，易使酒精溢出，发生事故。）添加酒精时一定要借助个小漏斗，以免将酒精洒出。燃着的酒精灯，若需添加酒精，必须熄灭火焰。决不允许燃着时加酒精，否则，很易着火，造成事故。万一洒出的酒精在桌上燃烧起来，要立即用湿棉布铺盖灭。用完酒精灯，火焰必需用灯帽盖灭，不可用嘴吹灭，以免引起灯内酒精燃烧，发生危险
(3)新灯加完酒精后须将新灯芯放入酒精中浸泡，而且移动灯芯套管使每端灯芯都浸透，然后调好其长度，才能点燃。因为未浸过酒精的灯芯，一经点燃就会烧焦。
(4)点燃酒精灯一定要用燃着的火柴，决不能用一盏酒精灯去点燃另一盏酒精灯。否则易将酒精洒出，引起火灾。（有时用打火机也行，但较容易烧到手，不提倡，不过在没有火柴的情况下也可以用打火机，实验操作考试时必须用火柴）
(5)加热时若无特殊要求，一般用温度最高的外焰来加热器具。加热的器具与灯焰的距离要合适，过高或过低都不正确。与灯焰的距离通常用灯的垫木或铁环的高低来调节。被加热的器具必须放在支撑物(三脚架、铁环等)上或用坩埚钳、试管夹夹持，决不允许手拿仪器加热。
(6)加热完毕或要添加酒精需熄灭灯焰时，可用灯帽将其盖灭，如果是玻璃灯帽，盖灭后需再重盖一次，放走酒精蒸汽，让空气进入，免得冷却后盖内造成负压使盖打不开；如果是塑料灯帽，则不用盖两次，因为塑料灯帽的密封性不好。决不允许用嘴吹灭。
不用的酒精灯必须将灯帽罩上，以免酒精挥发，因为酒精灯中的酒精，不是纯酒精，所以挥发后，会有水在灯芯上，致使酒精灯无法点燃。
(7)酒精灯不用时，应盖上灯帽。如长期不用，灯内的酒精应倒出，以免挥发；同时在灯帽与灯颈之间应夹小纸条，以防粘连。
(8)要用酒精灯的外焰加热，给玻璃仪器加热时应把仪器外壁擦干否则仪器炸裂，给试管中的药品加热，首先必须预热，然后在对着药品部位加热。加热时不能让试管接触灯芯，否则试管会炸裂。
如何标定氢氧化钠溶液及盐酸溶液（定溶）
盐酸标定
盐酸标定
一、配制洗耳球的正确使用方法：
0.02mol/LHCl溶液：量取1.8毫升盐酸洗耳球的正确使用方法，缓慢注入1000ml水。
0.1mol/LHCl溶液：量取9毫升盐酸，缓慢注入1000ml水。
0.2mol/LHCl溶液：量取18毫升盐酸，缓慢注入1000ml水。
0.5mol/LHCl溶液：量取45毫升盐酸，缓慢注入1000ml水。
1.0mol/LHCl溶液：量取90毫升盐酸，缓慢注入1000ml水。
二、标定：
1、反应原理： Na2CO3-+2HCl→2NaCl+CO2++H2O
为缩小批示剂洗耳球的正确使用方法的变色范围，用溴甲酚绿－甲基红混合指示剂，使颜色变化更加明显，该混合指示剂的碱色为暗绿，它的变色点PH值为5.1，其酸色为暗红色很好判断。
2、仪器：滴定管50ml；三角烧瓶250ml；135ml；瓷坩埚；称量瓶。
3、标定过程：
基准物处理：取预先在玛瑙研钵中研细之无水碳酸钠适量，置入洁净的瓷坩埚中，在沙浴上加热，注意使运动坩埚中的无水碳酸钠面低于沙浴面，坩埚用瓷盖半掩之，沙浴中插一支360℃温度计，温度计的水银球与坩埚底平，开始加热，保持270－300℃1小时，加热期间缓缓加以搅拌，防止无水碳酸钠结块，加热完毕后，稍冷，将碳酸钠移入干燥好的称量瓶中，于干燥器中冷却后称量。
称取上述处理后的无水碳酸钠（标定0.02mol/L称取0.02－0.03克；0.1mol/L称取0.1－0.12克；0.2mol/L称取0.2－0.4；0.5mol/L称取0.5－0.6克；1mol/L称取1.0－1.2克称准至0.0002克）置于250ml锥形瓶中，加入新煮沸冷却后的蒸馏水（0.02mol/L加20ml；0.1mol/L加20ml；02mol/L加50；0.5mol/L加50ml；1mol/L加100ml水）定溶，加10滴溴甲酚绿－甲基红混合指示剂，用待标定溶液滴定至溶液成暗红色，煮沸2分钟，冷却后继续滴定至溶液呈暗红色。同时做空白
4、计算：
C=m/（V*0.0529）
C（HCl）——盐酸标准溶液量浓度 mol/L
m——无水碳酸钠的质量（克）
V1——滴定消耗HCl ml数
V2——滴定消耗HCl ml数
0.05299－－与1.000盐酸标准溶液相当的以克表示的无水碳酸钠的质量。
5、注意事项：
1、在良好保存条件下溶液有效期二个月。
2、如发现溶液产生沉淀或者有霉菌应进行复查。
氢氧化钠标定
氢氧化钠（NaOH）的标定
一、目的要求
1.掌握NaOH标准溶液的配制和标定。
2.掌握碱式滴定管的使用，掌握酚酞指示剂的滴定终点的判断。
二、方法原理
NaOH有很强的吸水性和吸收空气中的CO2，因而，市售NaOH中常含有Na2CO3。
反应方程式： 2NaOH + CO2 → Na2CO3 + H2O
由于碳酸钠的存在，对指示剂的使用影响较大，应设法除去。
除去Na2CO3最通常的方法是将NaOH先配成饱和溶液（约52%，W/W），由于Na2CO3在饱和NaOH溶液中几乎不溶解，会慢慢沉淀出来，因此，可用饱和氢氧化钠溶液，配制不含Na2CO3的NaOH溶液。待Na2CO3沉淀后，可吸取一定量的上清液，稀释至所需浓度即可。此外，用来配制NaOH溶液的蒸馏水，也应加热煮沸放冷，除去其中的CO2。
标定碱溶液的基准物质很多，常用的有草酸（H2C2O4•2H2O）、苯甲酸（C6H5COOH）和邻苯二甲酸氢钾（C6H4COOHCOOK）等。最常用的是邻苯二甲酸氢钾，滴定反应如下：
C6H4COOHCOOK + NaOH → C6H4COONaCOOK + H2O
计量点时由于弱酸盐的水解，溶液呈弱碱性，应采用酚酞作为指示剂。
三、仪器和试剂
仪器：碱式滴定管（50ml）、容量瓶、锥形瓶、分析天平、台秤。
试剂：邻苯二甲酸氢钾（基准试剂）、氢氧化钠固体（A.R）、10g/L酚酞指示剂：1g酚酞溶于适量乙醇中，再稀释至100mL。
四、操作步骤
1. 0.1mol/L NaOH标准溶液的配制
用小烧杯在台秤上称取120g固体NaOH，加100mL水，振摇使之溶解成饱和溶液，冷却后注入聚乙烯塑料瓶中，密闭，放置数日，澄清后备用。
准确吸取上述溶液的上层清液5.6mL到1000毫升无二氧化碳的蒸馏水中，摇匀，贴上标签。
2. 0.1mol/L NaOH标准溶液的标定
将基准邻苯二甲酸氢钾加入干燥的称量瓶内，于105-110℃烘至恒重，用减量法准确称取邻苯二甲酸氢钾约0.6000克，置于250 mL锥形瓶中，加50 mL无CO2蒸馏水，温热使之溶解，冷却，加酚酞指示剂2-3滴，用欲标定的0.1mol/L NaOH溶液滴定，直到溶液呈粉红色，半分钟不褪色。同时做空白试验。
要求做三个平行样品。
五、结果结算
NaOH标准溶液浓度计算公式：
CNaOH = m/【（V1-V2）× 0.2042】
式中：m---邻苯二甲酸氢钾的质量，g
V1---氢氧化钠标准滴定溶液用量，mL
V2---空白试验中氢氧化钠标准滴定溶液用量，mL
0.2042---与1mmol氢氧化钠标准滴定溶液相当的基准邻苯二甲酸氢钾的质量，g
瑞氏染色的步骤是什么?
操作步骤：
1.滴加瑞氏吉姆萨A液(约0.5ml-0.8ml)涂片上，并让染液覆盖整个标本染色1min；
2. 再将瑞氏吉姆萨B液加于A液上面（滴加量为A液的2-3倍），以嘴或洗耳球吹出微风使液面产生涟漪状，使两液充分混合，染色3-10min。（染血片时间可略短，染骨髓片时间应视细胞量多少而异）
3.水洗（冲洗时不能先倒掉染液，应以流水冲去，以防有沉渣沉淀在标本上），干燥、镜检。
注意事项：
1. 染色时间须视何种标本，涂片厚度，有核细胞多少，何种细胞及室温等而定；通常染血液涂片时滴加B液后染2-4分钟，染骨髓片则应不少于8分钟；气温较低时，可适当延长染色时间。染色结果如出现嗜酸性粒细胞变碱，则考虑是否染色时间太长所致。
2.做骨髓涂片时，因为骨髓纤维蛋白含量较高，凝固较快，所以涂片过程要快。骨髓不可用草酸盐抗凝，否则会使血细胞核变形，核染色质致密，胞浆空泡形成，出现草酸盐结晶。
3.染液量需充足，勿使染液蒸发干燥，以防染料沉着于涂片上。
4.做细胞染色时，当天气寒冷或湿度较大时，应于37℃温箱中保温促干，以免细胞变形缩小或在染色时脱片。
5.染料放置时间越长，染色效果越好。
6. 本试剂应由专业人员使用。
拓展资料
Wrfeht和Giemsa都于1902年报告了各自的新的血液学染色剂，其主要特点是在制备多色性亚甲蓝（主要指天青B）方面做了改进，使血细胞和疟原虫着色较好，操作简便。
上述染色法均是含伊红和亚甲基蓝衍生物的复合染料。在临床检验工作中，瑞氏染色法常用于血液、其他体液、分泌物和排泄物涂片中各种细胞的染色，有利于在显微镜下观察细胞形态及对细胞进行分类检查。
【染色原理】
瑞氏染色分两相进行，第一相是酸性染料伊红与细胞中的碱性物质如血红蛋白、嗜酸性颗粒等结合；碱性染料天青B与细胞中的酸性物质如核染色质（chro－matin）、特异中性颗粒、血小板及富含核蛋白的胞质结合。第二相是天青B和伊红在适宜条件下形成紫色的天青B一伊红复合物（azure B－eosin complex），这种复合物是形成Romanowsky－Giemsa效应的基础。
Romanowsky－Giemsa效应包括：①白细胞核染色质染成紫色，疟原虫的染色质染成红色；②中性粒细胞的颗粒及血小板颗粒区染成紫色；③产生本效应必须有两种染料参与，一种是天青B，另一种是伊红。
Wittekind（1985）指出，天青B与DNA分子中的磷酸基结合，而伊红既与DNA分子中的阳离子部位结合，又与天青B结合，与天青B的结合力来源于电子供一受体的电子转移力，天青B的甲氨基（－NHCHs）与伊红分子中的叛基（－COOH）间形成氢键。因此，天青B是噻嗪类染料中能与伊红形成复合物的最佳选择，因为拥有四个甲基侧链的亚甲蓝不能以氢键与伊红结合。
甲醇除作为染料的溶剂，能将瑞氏染料解离成带正电荷的天青B和带负电荷伊红外，因其具有脱水力，还可将细胞固定为一定形态，并使蛋白沉淀为颗粒状、网状结构，增加细胞与染料的接触表面，增强染色效果。
细胞中的各种有机物质（特别是蛋白质）、染料等对环境的州值非常敏感。如环境偏酸，氢离子增多，降低对碱性染料的亲和力；增强伊红着色，出现异常红染；相反，则可出现异常蓝染。最佳环境应维持在PH值6 4～6、8.因此，必须使用缓冲溶液。
参考资料：
百度百科_瑞氏染色
瑞氏染色原理及方法_医学教育网
如何正确使用移液管 怎么正确使用移液管
1、使用前:应先将移液管洗净,自然沥干,并用待量取的溶液少许荡洗3次。
2、吸液:以右手拇指及中指捏住管颈标线以上的地方,将移液管插入供试品溶液液面下约1cm,不应伸入太多,以免管尖外壁粘有溶液过多,也不应伸入太少,以免液面下降后而吸空。左手拿橡皮吸球,一般用60ml洗耳球,轻轻将溶液吸上,眼睛注意正在上升的液面位置,移液管应随容器内液面下降而下降,当液面上升到刻度标线以上约1cm时,迅速用右手食指堵住管口,取出移液管。用滤纸条拭干移液管下端外壁,并使与地面垂直,稍微松开右手食指,使液面缓缓下降,此时视线应平视标线,直到弯月面与标线相切,立即按紧食指,使液体不再流出,并使出口尖端接触容器外壁,以除去尖端外残留溶液。
3、放液:小心取出移液管,放入接受容器中,在此过程中,不能让管中液体漏出,使管尖靠在接受容器的内壁上。保持移液管垂直而接受容器倾斜,抬起右手食指,让液体自由流出后,等待15秒左右,取出移液管。注意尖嘴处残留的少量液体不能用外力吹出,如果移液管上有注明“吹”字除外。
4、存放:如果每天都用,清洁完后选择一个稳定的架台,尖朝上存放。长期储存对于清洁的移液管,用带隔的抽屉底下垫有干净的塑料泡沫存放。最后,我们再给大家简单总结一下要点:检查移液管的型号、状态、清洁度;如果有必要的话,用待取液体冲洗移液管;用吸耳球吸取溶液到刻度线以上;用吸水纸擦净移液管;调整弯月面的位置,保证没有视差;移去移液管最后一滴;放出液体;把移液管尖端抵住容器壁等待指定时间,移去外面的一滴,通过转动移液管体如果标有《Ex》不要吹出管内液体;清洗擦净移液管;正确存放移液管。
如何正确使用移液管？
正确使用移液管是实验数据准确与否的一个重要操作步骤，具体使用方式如下：
1、移取时，需要用溶液润洗2-3次，左手拿像皮球轻轻将溶液吸上
2、这时眼睛需要注意上升的液面，当达到需要的刻度的时候停止吸液。
3、然后稍稍松开右手食指，使液面缓缓下降，至凹液面与标线相切。
4、然后移液管转移到容器中，此时需要使其出口尖端接触器壁。
5、容器稍微倾斜，移液管直立，使溶液自由的顺壁流下。这样就完成一次移液。
注意事项
放液后，残留在管尖内壁处的少量溶液，不可用外力强使其流出，因校准移液管或吸量管时，已考虑了尖端内壁处保留溶液的体积。
